Proteomiks nedir? - Endokrinolojide Diyalog Dergisi

DERLEME | Review Article
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
Proteomiks nedir? Tiroid hastalıklarıyla ilgili araştırmalarda
proteomiks
What is proteomics? Proteomics in thyroid diseases research
Gürler Akpınar1, Murat Kasap1, Zeynep Cantürk2, Nuh Zafer Cantürk3
1
Kocaeli Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Biyoloji AD, Klinik Araştırmalar Birimi Proteomiks Laboratuvarı, Kocaeli
Kocaeli Üniversitesi Tıp Fakültesi Endokrinoloji ve Metabolizma BD, Kocaeli
3Kocaeli Üniversitesi Tıp Fakültesi Genel Cerrahi AD, Kocaeli
2
Özet
Abstract
Son yıllarda “OMICS” teknolojileri gelişen alanlardan
biridir. Özellikle kanser tanı ve prognozunu kolaylaştıran
biyoişaretleyicilerin belirlenebilmesi için kanser araştırmalarında geniş şekilde kullanılmaktadır. Bu araştırmaların esas amacı cerrahi öncesi malign ve benign
neoplazmalar arasında ayırıcı tanı yapabilmek için yöntem geliştirmektir. Bu makalede biz tiroid tümör araştırmalarında proteomiks uygulamalarını tartışmayı
amaçladık. İlk olarak proteomiks nedir onu anlattık.
İkinci olarak da insanlarda tiroid hastalıkları ile ilgili yayınlanmış proteomiks çalışmalarının sonuçlarını özetledik. Sonuç olarak tiroid neoplazmları için işe yarar
işaretleyicileri belirlemek ve tiroid kanser biyolojisi ile ilgili bilgilerimizi derinleştirmek için daha fazla çalışmaya
gereksinim olduğu kanaatine vardık.
In recent years “OMICS” technologies are one of developing fields and are becoming widely used in cancer
research especially for the discovery of biomarkers facilitating diagnosis and prognosis of cancer patients.
Scientists have long been searching for useful markers
in patients with thyroid neoplasms. The major goal of
this research is to discover markers to distinguish between malignant and benign thyroid tumors prior to
surgery. In this manuscript we aimed to discuss the application of proteomics to thyroid tumor research.
Firstly we gave a definition of proteomics and secondly
we summarized the results of published proteomics
studies on human thyroid disease. We conclude that
there is a need for further studies to identify useful
markers for thyroid tumors which will also serve to
deepen our understanding of thyroid cancer biology.
Anahtar sözcükler: tiroid, proteomiks
Keywords: thyroid, proteomics
Proteomiks
Yeni bir yaklaşım olarak önemi giderek artan “proteomics” çalışmaları, özellikle insan genom projesinin tamamlanmasının ardından hız kazanmış ve yaygın bir
uygulama alanı bulmuştur. Genom araştırmaları, özellikle insan genom projesi, genlerin yapı, fonksiyon ve
ekspresyonlarına ait ayrıntılı bilgileri gün ışığına çıkarmıştır. Bunun yanında genom projesi genetik bilginin
organizma tarafından nasıl kullanıldığını açıklamakta
yetersiz kalmıştır. Bu noktadan sonra genetik bilginin
son ürünü olan proteinlerin işlev, yapı ve yerlerini belirlemek amaçlı yeni bir yaklaşım olan ve “genom sonrası
çağ” olarak belirlenen proteomiks uygulamaları her
geçen gün önemini artırmıştır.
Proteomikse ilişkin araştırmaların tarihi protein çalışmaları ile başlasa da bilinen anlamı ile metot olarak
kökenleri 1975’li yıllara uzanmaktadır1. “Proteom” terimi ise ilk defa 1994 yılında bir sempozyumda Marc
Wilkins ve ark. tarafından bir genomun ifade ettiği tüm
Yazışma Adresi | Correspondence: Prof.Dr.Nuh Zafer Cantürk
Kocaeli Üniversitesi Tıp Fakültesi, Genel Cerrahi Anabilim Dalı Umuttepe
Kocaeli, Tel: (0262) 303 07 41; Faks:0.262.3037003
e-posta: canturkz@yahoo.com
Başvuru tarihi | Submitted on: 28.06.2011
Kabul tarihi | Accepted on:24.08.2011
166
© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Proteomiks nedir? Tiroid hastalıklarıyla ilgili araştırmalarda proteomiks
proteinleri tanımlamak için önerilmiş (PROTein-genOME) ve 1995 yılında doktora tezinin parçası olarak
bilim literatürüne kazandırılmıştır2. Daha genel bir tanımlama ile “proteom” terimi, belirli bir anda ve şartlar
altında hücrenin veya organizmanın sahip olduğu proteinlerin tümünü tanımlamak için kullanılmaktadır. Bir
organizmada genomun değişmeyen doğasının tam tersi
şekilde proteomun içeriği dokudan dokuya hatta bir
hücreden diğer bir hücreye farklılaşabilmekte, çevresel
faktörler, yaş, cinsiyet, hastalıklar ve fizyolojik durumlar (hücre siklusu, apoptoz gibi) gibi iç ve dış faktörlere
etkileşerek değişim gösterebilmektedir.
Son yıllarda, biyomedikal araştırmalarda genomiks
(genomics) baskın araştırma alanı olsa da proteomiks
alanında araştırmalar bilimsel araştırma grupları ve klinik araştırma laboratuvarlarında çok hızlı bir şekilde
yayılmakta ve genomiks’in yerini almaktadır. Bu eksen
kaymasının en önemli sebebi, biyolojik örnek olarak
proteinlerin bir organizmanın o an içinde bulunduğu
fizyolojik durumunu yansıtmasıdır, bu özelliği ile özellikle klinik araştırmalarda hastalıkların teşhis ve ilerleyişinin belirlenmesinde büyük öneme sahiptir.
Genom ve proteom
Çalışma alanı olarak hedef makromoleküller göz önüne
alınarak genomiks ve proteomiks kavramları karşılaştırıldığında, proteomiksin çok daha karmaşık ve zor bir
alan olduğu ortaya çıkacaktır. DNA ve proteinlerin kabaca genel özelliklerine bakılması bile bu karmaşıklığın
ve zorluğun nedenini ortaya koyacaktır (Tablo 1). Proteinlerin aminoasit dizileri ait oldukları gen tarafından
belirlenmekle birlikte sadece genetik kodun kendisi bir
protein hakkındaki tüm bilgiyi sağlamaz. Yalnız dört
nükleotidin kombinasyonundan oluşan sabit, esnek olmayan tek boyutlu genomik organizasyonun aksine proteinlerde kodlanan bilgi sadece aminoasit dizeleriyle
sınırlı değildir3. Genler tarafından kodlanan mesajcı
RNA’nın (mRNA) birden çok alternatif işleniş şekillerinin olması (alternative splicing), protein sentezi sonrası meydana gelen füzyonlar ve post-translasyonel
modifikasyonlar gibi düzenlemeler proteomun sıkı bir
şekilde kontrol edilen dinamik yapısını, çok boyutluluğunu, değişkenliğini etkilemektedir. Bu durum gen sayısından çok daha fazla sayıda özgün protein
molekülünün nasıl oluştuğunu açıklamaktadır4.
Genomiks çalışmaları, hastalıklar ve ilgili genler arasındaki ilişkinin bir kısmını ortaya koymasına rağmen
son ürün olan proteinlerin çoğunun maruz kaldığı
translasyon sonrası modifikasyonları post translation
modifications (PTM) öngöremez ve bunlarla hastalıklar
arasındaki ilişkiyi kuramaz. DNA/RNA elde edilmesi
ve çalışılması kolay örnekler olmasına rağmen bunlardan elde edilen bilgide sınırlamalar mevcuttur. Bir hücredeki gen dizisi bilgilerinin ve gen aktivite motiflerinin
niçin proteinlerin miktar, nihai yapıları veya aktivite durumları hakkındaki doğru profilleri yansıtmadığını
gösteren pek çok sebep vardır. Ribozomların sentezi
sonrası proteinler başlangıç, geçiş ve sinyal peptidlerinden kurtularak basit kimyasal grupların veya kompleks moleküllerin eklenmesi ile translasyon sonrası
modifikasyona uğrarlar. Bir gen transkripti proteine
çevrilmeden önce pek çok değişik şekilde işlenebilir.
Translasyonun ardından, çoğu protein translasyon
sonrası modifikasyonlar yoluyla kimyasal olarak değiştirilirler. En çok gözlenen modifikasyonlar proteinlere karbonhidrat ve fosfat gruplarının eklenmesi ile
olmaktadır. Bu gibi modifikasyonlar, proteinlerin
fonksiyonları üzerinde çok önemli etkileri olmasına
rağmen genler tarafından kontrol edilmezler. Sabit ve
dinamik 300’den fazla PTM belirlenmiştir, bunlardan
başlıcaları fosforilasyon, glikolizasyon, asetilasyon,
deaminasyon, sülfasyon, palmitoylasyondur. Sonuç
olarak tek bir gen 50’den fazla farklı proteini kodlayabilir. Genom Projesinin tamamlanmasının ardından
insanda yaklaşık olarak 20.000 ila 25.000 arasında
protein kodlayan genin var olduğu tahmin edilmektedir. Bu genler potansiyel olarak 25.000 farklı proteini
kodlamaktadır, fakat mRNA’nın farklı kesilmeleri (alternative splicing) ve PTM’ler göz önüne alındığında
bu sayı 2.000.000 protein veya protein fragmentine ulaşabilmektedir5,6,8.
Tablo 1: DNA ve proteinlerin genel olarak karşılaştırılması
DNA
Proteinler
Sabit bir yapıya sahiptir.
Dinamiktir ve başka proteinlerle interaksiyon yapabilir.
PCR ile çoğaltılması mümkündür.
Basit bir metotla tek basamakta çoğaltılamaz.
Karmaşık bir yapıya sahip değildir.
Sentez sonrası modifikasyonlardan dolayı çok komplekstir.
Kolay ve iyi çözünür.
Sadece dört nükleotidden meydana gelen
basit, sade bir diziye sahiptir.
Proteinden proteine değişen çok farklı çözünme dereceleri vardır.
Yirmi modifiye olmamış ve pek çok modifiye olmuş aminoasitten meydana
gelen karmaşık bir makromoleküldür.
© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
167
168
Cantürk NZ. ve ark.
Aktif bir proteinin aminoasit sırası DNA dizi analizi
ile önceden belirlenemediği gibi, belirlenen RNA seviyeleri hücredeki doğru protein miktarlarını da yüzde
yüz doğrulukta yansıtmamaktadır PTM’ler ve mRNA
farklı kesimleri de hesaba katıldığında her bir genden
çok sayıda farklı protein elde edildiği görülecektir7.
Yukarıda bir kısmından bahsedilen pek çok kısıtlamadan dolayı, DNA ve RNA’dan yola çıkarak hücrelerde fonksiyonel görev yapan proteinler hakkında kesin
verilere ulaşmak mümkün değildir. Bundan dolayı proteomiks alanı, gen ekspresyonunun proteom seviyesinde
incelenmesine olanak sağlayan, nispeten yeni ve bilimin
çok hızlı şekilde gelişen bir bilim daldır.
Proteomiks denildiğinde sadece proteinlerin adlandırılması anlaşılmamalıdır. Yaşlanmaya, strese ve ilaçlara verilen cevaplarda, hastalık durumlarında değişen
protein profillerinin belirlenmesi, proteinlerin miktarlarının tayin edilmesi (quantification), hücre, doku ve
organ seviyesinde lokalizasyonları, sahip oldukları translasyon sonrası modifikasyonların betimlenmesi, yapı
ve fonksiyonlarının ortaya çıkarılmasının yanında
mümkün olan protein-protein ilişkilerinin ortaya konması proteomiks çalışmalarının başlıca alt başlıkları
arasındadır.
Proteomiks alanında çalışmalar, hastalık ve sağlık
koşullarında farklı şekilde eksprese olan proteinlerin belirlenmesi, araştırılması ve tanımlanması için çok geniş
bir fırsat sunmuştur. Bu alana odaklanmış olan klinik
proteomiks çalışmaları sayesinde daha iyi diagnostik ve
prognostik işaretleyicilerin (biomarker’ların) geliştirilmesi, yeni tedavi hedeflerinin keşfi ve en sonunda kişiye
özgü tedavilerin geliştirilmesi mümkün olacaktır.
Klinikte kullanılacak iyi bir protein
biyoişaretleyicinin (biomarker) özellikleri
Meydana gelen bir patolojik süreçte doğru ve hızlı tanı
hastanın tedavisini etkileyen en önemli faktörlerden birisidir. Tanı amaçlı kullanılacak olan bir biyon, normal
biyolojik veya hastalığa ait süreçlere ait objektif olarak
ölçülebilen ve değerlendirilen bir işaretleyicidir. Patolojik duruma bağlı olarak değişimleri gözlenebilen bir biyoişaretleyici, yüksek risk altındaki bireyleri izleme
imkanı verdiği gibi, hastalığın tedavi edilebilir erken bir
safhasında teşhisini de kolaylaştırmaktadır. İdeal bir biyoişaretleyicinin genel olarak şu özelliklerinin olması
beklenmektedir. (a) belirli bir hastalık için ileri derecede
özgül olmalıdır; (b) yüksek hassasiyete sahip olmalıdır;
(c) kolay kullanımı olmalıdır; (d) standart sonuç vermelidir; (e) tekrarı kolay olmalıdır; (f) kullanılacak örnek
mümkün olduğunca kolay elde edilmelidir ve (g) sonucu
değerlendirecek olan klinisyen için açık ve kolay anlaşılabilir olmalıdır. Bütün bu sayılanlar bir klinik kullanımını etkileyecek faktörlerdir. Teorik olarak her bir
hastalık kendine özel biyoişaretleyici ile belirlenebilir ve
tanımlanabilir olmalıdır. Fakat çoğu hastalık durumu
için biyoişaretleyiciler, panel olarak artan ya da azalan
proteinlere bakılarak veya değişen translasyon sonrası
modifikasyonların özellikleri araştırılarak bulunmaya
çalışılmaktadır.
Tedavi ve tanı amaçlı protein biyoişaretleyici panellerin keşfedilmesi günümüzde klinik proteomikse ilişkin
klinik çalışmaların en önemli ilgi alanlarından birisidir.
Dokulardan klinik olarak kolay ulaşılabilen biyolojik
sıvılara (kan, idrar, BOS vb.) sızan peptid ve proteinler
biyoişaretleyici arayışında en sık kullanılan kaynaklardır. Kullanılabilecek pek çok vücut sıvısı arasında kan,
kolay erişilebilir, en az invazif, ucuz ve plazmaya çevrilmesi pek çok klinik laboratuvarda kolaylıkla yapılabilir
olmasından dolayı en çok tercih edilendir9.
Bir proteomiks çalışmasında en önemli aşamalardan biri öncelikle araştırmanın yapılacağı konuya
uygun örnek materyalinin seçilmesi ve bu materyalden
protein özütünün elde edilmesidir. Klinik proteomiks
çalışmaları göz önüne alındığında karşımıza en sık
örnek elde edilen üç kaynak çıkmaktadır. Bunlar biyolojik sıvılar, doku örneği ve hücre kültürü örnekleridir.
Çalışılacak her bir örneğin kaynağına ve proteomiks
uygulamasına bağlı olarak protein özütünün elde
edilme metodu da farklılaşmaktadır. Proteomiks çalışmalarında kullanılan teknolojileri ve kullanım alanlarını tanımlamaya çalışacağız.
Protein ayırma metotları
Proteinlerin kütle spektrometresi (Mass Spectrometry,
MS) kullanılarak belirlenmeleri ve adlandırılmaları proteomiks analizlerde kullanılan en temel yaklaşımdır.
Protein veya daha karmaşık bileşim örneklerinin MS
analizleri için hazırlanmalarında pek çok adımı içeren
ayırma metotları kullanılmaktadır. Proteinlerin, MS
analizinde kullanılmak üzere kimyasal veya enzimatik
olarak peptid seviyesinde parçalanmaları gerekmektedir. Protein ayırma stratejilerinin temel adımları protein
örneklerinin kesim için hazırlanmaları, araştırılan herhangi bir peptidin zenginleştirilmesi, MS analizinde kullanılacak peptid karışımının tuzlardan uzaklaştırılması
ve temizlenmesidir (Şekil 1).
Proteom analizlerinde parçalanmamış protein ayırımı ve peptid ayırımı olarak iki genel yaklaşım sıklıkla
karşımıza çıkmaktadır. Özellikle protein ve protein
komplekslerinin ayırımında kullanılan metotlar arasında bir ve iki boyutlu jel elektroforezi (1-DE ve 2DE), bir ve iki boyutlu sıvı kromatografisi (1D LC ve
2D LC) ve afinite kromatografisi bulunmaktadır. Peptid ayırımı için ise daha sınırlı ayırım metotları ile ana
proteini temsil eden peptidlerin elde edilmesinde fosfopeptid zenginleştirmesi ve ters faz kromatografisi
(reversed-phase chromatography) teknikleri kullanılmaktadır17.
© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
Proteomiks nedir? Tiroid hastalıklarıyla ilgili araştırmalarda proteomiks
169
Proteomiks
Ekspresyon Proteomiks
Yapısal Proteomiks
Fonksiyonel Proteomiks
Örnek Hazırlama
ve Ayırma
Organel Proteomiks
Jel Tabanlı Proteomiks
2DE
2DE -DIGE
MALDI-TOF/TOF
ESI-TOF
İşaretleme
(SILAC, ICAT vs.)
Farklılaşma Paterni
Kantifikasyon
PTM
Protein İdentifikasyonu
Shotgun Proteomiks
MudPIT
(RPLC-MS, RP HPLC
LC-MS/MS
Veri Analizi
(Mascot, Comet, Sequest vs.)
Protein Veri Tabanı Analizi
(Swiss Prot, NCBInr, TrEMBL vs.)
Şekil 1. Genel olarak proteomiks çalışmalarının akış şeması
İki boyutlu jel elektroforezi (2-D PAGE)
İlk bilim sahnesine çıktığı 1975 yılından bu yana, proteinlerin kütle (MW) ve izoelektrik noktalarına (pI)
göre ayırımlarının yapıldığı en etkili ve güvenilir metot
olarak iki boyutlu poliakrilamid jel elektroforezi (2-D
PAGE) kullanılmaya devam etmektedir1. Bu iki boyutlu
yöntem ile binlerce farklı proteini tek jel üzerinde birbi© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
rinden ayırmak mümkündür. Bu metotta ilk önce proteinler izoelektrik noktalarına göre birinci boyutta ayrılırlar. Daha sonra ise kütlelerine göre ikinci boyutta
ayırıma tabi tutulurlar. Odaklama (focusing) esnasında
proteinler değişmeyen pH gradyant jeller (IPG strip)
üzerinde izoelektrik noktalarına göre hareket ederler
(Şekil 2). İkinci boyutta ayırım ise değişik yüzdelerdeki
lineer veya gradyant sodyum dedosil sülfat jelleri (SDS-
170
Cantürk NZ. ve ark.
A.
Proteinlerin IPG striplere rehidratasyonu
Örneklerin izoelektrik noltalarına göre fokuslanmaları
PI
Yük
B.
kütle
mw
C.
Lazer
D.
Matriks
Uçuş tüpü
İyonizasyon
Dedektör
Kütle yük (m/z)
Şekil 2. Protein örneklerinin 2D jellerle ve MALDI ile analizi. Biyolojik örneklerden elde edilen protein özütlerinin IPG striplere rehidrasyonları
ve fokuslanmaları (A). Fokuslanma esnasında izoelektrik noktalarına göre ayrılan proteinler 2D jellerde moleküler büyüklüklerine göre ayırıma
tabi tutulurlar (B). Jellerin uygun bilgisayar programlarında analizleri sonucunda belirlenen farklılaşmış protein spotlarının kesilerek, uygun proteolitik enzimlerle peptidlerine ayrılması ve MALDI plaklarına yerleştirilmeleri (C). İyonizasyon sonrası peptidlere ait m/z oranlarının bulunması
ve veri tabanı analizi (D).
PAGE) kullanılarak proteinlerin kütle büyüklüklerine
göre yapılır11,12. Bu teknik insan hücre kültürü, doku ve
serum proteom analizlerinde ön fraksiyonlama veya
zenginleştirmeye ihtiyaç duyulmaksızın kullanılabilmektedir6. Bu translasyon sonrası modifikasyonlarında
belirlenebildiği oldukça güçlü bir ayırma yöntemi olarak klinik proteomiks çalışmalarının vazgeçilmez bir
tekniğidir. 2D jeller üzerindeki protein spotlar Coomassie mavisi G-250, R-250, gümüş, SYPRO Ruby ve Deep
Purple gibi boyalar kullanılarak görünür hale getirile© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
Proteomiks nedir? Tiroid hastalıklarıyla ilgili araştırmalarda proteomiks
bilir. Bu boyama metotları arasında en yüksek çözünürlüğe sahip olanları gümüş ve SYPRO Ruby boyamalar
olmasına rağmen gümüş boyama daha ileri MS için
uygun değildir. Görünür hale getirilen jeller uygun ışık
kaynağı ve kameralar kullanarak daha ileri analizlerin
yapılmasına izin verecek formatta kaydedilebilir.
Değişik floresan boyaların kullanıldığı farklı jel elektroforezi (Difference Gel Electrophoresis, DIGE) son
yıllarda 2D jel analizlerinde sıkça kullanılan ve büyük
avantajlar sağlayan bir metot olmuştur. Bu metot fokuslama öncesi protein örnekleri üzerindeki lizin gruplarının floresan bir boya olan Cyanin (Cy) ile direkt olarak
işaretlenmesi prensibine dayanmaktadır13. Bu metotu en
güçlü kılan özellik, birden fazla örneği farklı Cy boyalarla (CyDye) işaretleyerek aynı jel üzerinde yürütüp görüntülemeye olanak vermesidir. Bu sayede farklı
örneklerden elde edilecek olan jelden jele farklılaşmalar
ortadan kaldırılabilmekte, spotlar arasındaki eşleştirme
zorlukları en aza indirgenmekte ve tek bir jel sayesinde
çok daha kesin sonuçlar daha basitçe elde edilebilmektedir. CyDye’ler kullanılarak yapılan çalışmalar arasında en yaygın olan deneysel plan, iç standardın Cy2
ile işaretlenirken kontrol ve hasta/deney grubunun ise
Cy3 veya Cy5 kullanılarak işaretlenmesidir. Analiz esnasında iç standarda göre yapılan sinyal normalizasyonu sonrasında iki grup arasında hem kantitatif hem
de kalitatif karşılaştırma istatistiki olarak kolayca ya-
171
pılabilmektedir. Bu boyaların görüntülenmesinde her
biri için ayrı lazer kaynakları ve filtreler gerekmektedir.
CyDye’ler kullanıldığında işaretlenen proteinin kütlesinde 500 Da artış olduğunu daha sonraki analizler sırasında unutmamak gerekmektedir. Her ne kadar bu
floresan boyalar lizin aminoasidine bağlansa da daha
sonra gerçekleştirilecek olan tripsin kesimi ve TOF/MS
analizleri için sorun oluşturmamaktadır14,15.
Sıvı Kromatografisi
Bir ve iki boyutlu sıvı kromatografisi (Liquid Chromatography, LC) proteomikste protein ayırımında kullanılan en güçlü metotlardandır. Bir boyutlu sıvı
kromatografisi proteinlerin büyüklük (MW), yük (pI)
veya hidrofobisite gibi kimyasal özelliklerini kullanarak
ayırım yapar. En yaygın olarak kullanılan 1D LC ters
faz kromatografisidir. Bu yöntemde proteinlerin ayrımı
hidrofobisitelerine dayanılarak yapılmaktadır. 1D LC
en sıklıkla MS analizi öncesi peptid ayırımında kullanılmaktadır fakat aynı zamanda proteinlerin enzimatik
kesimleri ve MS analizi amaçlı protein ayırımında da
kullanılmaktadır. 2D LC’de ise proteinler ilk boyutta
izoelektrik kromatografisi (pI) ikinci boyutta hidrofobisitelerine göre ayırıma tabi tutulurlar. İki boyutlu jel
elektroforezi ve sıvı kromatografisi gibi tekniklerin kombine olarak kullanılması ayırım gücünü artırmakta ve
Kantitatif Proteomiks İşaretleme Teknikleri
2D temelli metot
MS temelli metotlar
Floresan Cye Boyama
ile
İşaretleme
In vivo Metabolik İşaretleme
In vitro İşaretleme
SILAC
Kimyasal İzotop İşaretleme
Şekil 3. Sıklıkla kantitatif analizler için kullanılan protein ve peptid işaretleme yöntemleri
© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
18
O İşaretleme
172
Cantürk NZ. ve ark.
özellikle protein izoformlarının ve translasyon sonrası
modifikasyonların (PTMs) belirlenmesinde büyük
önem taşımaktadır22.
İzotopik işaretleme
İzotopik işaretleme in vivo veya in vitro olarak yapılabilmektedir. Farklı izotopların protein ve peptidlerin yapısına katılması ve daha sonrasında araştırılan protein
veya peptidlerin (ağır izotop) kontrollerle (işaretlenmemiş veya hafif izotop) karşılaştırılması prensibinden
yola çıkılarak geliştirilmiştir. Özellikle jelden arınmış
(gel-free) kantitatif proteomiks yapmaya olanak sağlayan hücre kültüründe aminoasitlerle stabil izotopla işaretleme/Stable Isotope Labelling by Amino Acids in
Cell Culture (SILAC) ve izotop eklenmiş kuyruk Isotope-Coded Affinity Tags (ICAT) teknikleri sıklıkla
karşımıza çıkmaktadır (Şekil 3).
Hücre Kültüründe Aminoasitlerle Stabil İzotopla
İşaretleme (SILAC)
Özellikle hücre kültürü örneklerinin kütle spektrometresi kullanarak tüm proteomu kantitatif olarak karşılaştırma olanağı sağlayan en önemli metotlardan biri
stabil izotop işaretlemesidir (SILAC)16. Hücreler izotopik olarak işaretlenmiş aminoasitleri içeren (13C veya
15N işaretli aminoasitler) ortamda normal olarak büyüme ve gelişmelerine devam ederken bu aminoasitler
bu hücrelerin proteomlarına entegre olmaktadır. Bu
metotun en büyük avantajı farklı aminoasitlerle işaretlenmiş örneklerin preotein ekstraksiyonu, ayrımı ve
analizi öncesi bir araya getirilmeleri ve birlikte bu süreçlere tabi tutulmalarıdır. Böylelikle bu basamaklardan kaynaklanacak örnekler arası ayrıcalık ortadan
kaldırılmaktadır. Bu teknik özellikle metabolik olarak
aktif hücrelere kolaylıkla uygulanabilmektedir. Farklı
izotopla işaretlenmiş aynı proteinin hangi izotopik aminoasitle işaretlendiğine bağlı olarak kütlesinde MS
analizinde kolaylıkla ortaya çıkabilen bir farklılaşma
meydana gelir. Sonuç olarak iki farklı izotopla işaretlenmiş hücre kültürlerinin proteomları birlikte aynı
MS/MS analizine tabi tutulur, izotopların peptidler
arasında yarattıkları kütle farkından dolayı seçilen peptidlerin kantitatif olarak karşılaştırılması mümkün
olur17.
18
O proteolitik işaretleme
proteazlar ile beraber ikinci bir kesim sırasında gerçekleştirilir.
Proteaz
R-C16ONHR' + H218O
R-C16O18O- + +H3NR' (2 Da)
Proteaz
R-C16O18O- + H218O
R-C18O18O- + H216O (4 Da)
Kantitatif olarak karşılaştırılmak istenilen örnek
gruplarından bir tanesi H216O içeren tamponda proteolitik kesime tabi tutulurken 16O işaretlenir, diğer örnek
ise H218O bulunan tamponda kesilir ve 18O ile işaretlenmiş olur. Burada işaretleme proteolitik peptidlerin Cterminal karboksil gruplarındaki oksijen atomunun
değiştirilmesi ile olmaktadır. Kesim sonucunda işaretlenen örnekler daha sonra 1:1 oranında karıştırılarak
analiz edilir. Örnek üzerinde proteolitik olarak eklenen
bir 18O atomu, peptidin kütlesinde 2 Da’luk bir kaymaya neden olur, eğer işaretleme tam olarak gerçekleştirilmiş ve iki 18O atomu eklenebilmişse kütledeki kayma
4 Da çıkmaktadır. Tripsin ve Glu-C gibi proteolitik enzimler iki oksijen atomu üzerinde değişiklik yaparken,
Lys-N ve diğer enzimler sadece tek oksijen atomunu işaretleyebilmektedirler18-20.
Kimyasal işaretleme
Günümüzde proteomiks araştırmalarında en sık ve yaygın olarak kullanılan kimyasal yolla işaretleyip miktar
tayini yapmaktadır. Peptid veya proteinlerin üzerine eklenen tag’ların (kuyruk) farklı kimyasal reaksiyonlar yoluyla istenilen şekilde eklenebilmesi araştırmacılara
birden çok sayıda işaretleme seçeneği sunmaktadır.
Ancak metodolojinin çok sayıda olması, bu konuda yapılan çalışmalara geniş bir bakışı imkansız kılmaktadır.
Yine de bir genelleme yapmak gerekirse üç temel işaretleme stratejisi verilebilir. Bunlardan ilki, küçük molekülleri kullanarak verimi yüksek bir şekilde işaretleme
yapan tekniklerdir. İkincisi katı bir destek matriksi kullanarak peptidleri işaretleme yoludur, bu yolda işaretlenmiş peptidlerin temizlenmesi ve yüksek verimle geri
kazanılması kolaydır. Son olarak üçüncü stratejide ise
destek matriksi üzerine kaplanmış çözülebilir bir polimer kullanılmakta ve böylelikle daha homojen bir işaretleme sağlanabilmektedir21.
18
O ile yapılan proteolitik işaretleme diğer yöntemlerle
kıyaslandığında, kolaylığı ve hemen uygulanabilir
oluşu ile özellikle klinik uygulamalardaki biyoişaretleyici araştırmalarında tercih edilen bir yaklaşımdır.
Enzimatik olarak yapılan bu işaretleme reaksiyonu,
proteolitik kesim esnasında veya proteolizis sonrası
İzotopla işaretlenmiş kuyruk (ICAT)
Bu teknikte izotopla işaretleme SILAC’de olduğu gibi
in vivo olarak gerçekleşmemektedir. Elde edilen protein
yada peptid örnekleri kimyasal problar kullanılarak işa© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
Proteomiks nedir? Tiroid hastalıklarıyla ilgili araştırmalarda proteomiks
173
Tablo 2: Tiroid dokusunda proteomik çalışmaları (24 ve 25 no’lu makalelerden adepte edilmiştir.)
Kaynak
Teknik
Bulgu
Tiroid dokusu (39)
2D jel elektroforezi
31 farklı protein eksprese edildi. Özellikle S1006A papiller tiroid kanserinde 6.5 kat fazla
Tiroid dokusu (40)
2D jel elektroforezi
Histon H2Bi sitokeratin 7 Foliküler kanserde adenoma göre daha fazla, Sitokeratin 8 78lDa, glikoz regulated protein, calreticulin, annexin A3, β-actin
Tiroid dokusu (34)
Kantitatif 2D jel
elektroforezi
Soğuk nodülde normoaktif nodüle göre Annexin A4, annexin V, apolipoprotein A-I
prekürsörü, apolipoprotein, DJ-1, glutation, S transferaz π, heat şok proteini 90β v.d.
Serum (42)
SELDI-TOF-MS
Papiller karsinom ile sağlıklı, papiller karsinom ile benign nodül, papiller karsinomun
farklı safhaları, tiroid kanserinin farklı patolojik tiplerini ayırmaya yarayan ekspresyon
paterni
Serum (43)
SELDI-TOF-MS
Benign ile papiller kanser arasında ayırıma yarar
Hücre kültürü (31)
Glikoprotein denatuHer hücre hattında ortalama 150 glikoprotein saptandı. Bazı proteinler
rasyonu, sindirim, solid diferansiye veya anaplastik kanser için spesifiktir.
faz ekstraksiyonu ve
ESI-MS/MS analiz identifikasyonu
retlenmektedir. Bu kimyasal problar üç ana parçadan
oluşmaktadır. Bunlar, belirli aminoasitlerin yan zincirlerine işaretleme yapma kapasitesindeki reaktif grup
(örneğin iodasetamid sistein rezidülerini modifiye eder),
bir izotopik olarak kodlanmış bağlayıcı kısım ve işaretli
protein veya peptidlerin afinite izolasyonuna imkan sağlayan kuyruk (örneğin biotin) kısmıdır. İki proteomun
kantitatif olarak karşılaştırması için bir örnek izotopik
olarak hafif probla işaretlenirken diğeri ağır olanla işaretlenmektedir. Hata payını en aza indirmek için iki
örnek daha sonra birleştirilerek proteazlarla (örneğin
tripsin) kesilir ve örnek zenginleştirmek için afinite kromatografisinin (örneğin avidin veya streptavidin) ardından LC-MS ile peptidler analiz edilir. Farklı
işaretlenmiş olan peptid çiftleri arasındaki intensite
oranı iki örnek arasındaki proteinlerin rölatif seviyelerini belirlemede kullanılır21.
Kütle spektrometresi (MS)
MS ile yapılacak analizlerde peptid ya da proteinin öncelikle gaz fazındaki iyonlara ayrılması gerekmektedir.
Proteomiks uygulamalarından önce de kütle analiz cihazları kullanılmaktaydı, fakat bu cihazların özellikle
iyonlaştırma yöntemleri çok şiddetli olduğunda protein ve peptidlere uygulanabilir değillerdi. Seksenli yılların sonlarında geliştirilen birbirinden farklı yumuşak
iyonizasyon (soft ionization) teknikleri ile MS teknolojisinin proteomikse uygun hale gelmesi bu alanda
çok büyük bir gelişmeye neden olmuştur. Bu yeni iyo© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
nizasyon teknikleri sayesinde büyük molekülleri bütünselliklerini bozmadan analizi yapılacak gaz fazında
iyonlara çevirmek mümkün olmuştur. Kütle spektrometresi çok küçük ağırlıktaki ve az miktarlardaki örnekleri yüksek doğrulukta analiz etme olanağı
sağlamıştır. Proteinler genellikle enzimatik kesim (çoğunlukla tripsin) sonrası peptidler halinde analiz edilirler. Proteinleri, peptidleri ve diğer analistleri
kütle/yük oranına (m/z) göre sınıflandıran kütle spektrometresi kullanılmaya başlandığından günümüzde
proteomiks uygulamalarının vazgeçilmez bir enstrümanıdır. MS’lerde proteomiks amaçlı olarak sıklıkla
kullanılan yumuşak iyonizasyon metotları elektrosprey iyonizasyon, matriks yardımlı lazer salınım iyonizasyon Matrix-Assisted Laser Desorption/
Ionization, (MALDI) ve yüzey yardımlı lazer salınım
iyonizasyonudur Surface-Enhanced Laser Desorption/Ionization, (SELDI)6. Kullanılan MS türüne bağlı
olarak iyonize edilen moleküller yüksek vakum altında
oluşturulmuş olan elektriksel alan vasıtasıyla kütle
analizcisinin içersine itilirler, burada her bir iyon m/z
oranına göre belirlenirler. Peptidlerin kütlelerini belirlemek üzere farklı tiplerde kütle analizcileri geliştirilmiştir. Örneğin uçuş zamanı/Time of Flight, (TOF)
analizcisinde peptidlerin yüksek vakum altında çalışan
bir tüp içindeki detektöre kadar olan uçuş sürelerinden
kütleleri hesaplanmaktadır. Bundan başka “Quadropole”, “Ion Trap” ve “Fourier Transform Ion Cyclotrone Resonance (FTICR)” gibi peptid analizcilerde en
sık kullanılan MS enstrümanlarıdır.
174
Cantürk NZ. ve ark.
Her bir protein aminoasit dizisine bağlı olarak kendisine özel peptid kütle parmak izine Peptide Mass Fingerprint (PMF) sahiptir. MS’den elde edilen kütle
spektrumları veri bankalarında karşılaştırmalı olarak
araştırıldıktan sonra hangi proteine ait oldukları belirlenir. Bunun yanında MS ile peptidlerin daha ileri fragmente edilmelerinden elde edilen aminoasitlerin analiz
edilmesi (MS/MS), böylelikle proteinlerin aminoasit dizilerinin elde edilmesi mümkündür ve veri analizleri yapılarak aminoasit dizisinden protein tanımlanmasına
gidilebilmektedir.
Tiroid hastalıklarında proteomiks
Gerek temel bilimciler gerekse klinisyenler özellikle tiroid neoplazmalarında olmak üzere pek çok tiroid hastalığı için erken tanı ve prognoz açısından kullanışlı
biyoişaretleyici bulmak için araştırmalarına yoğun şekilde devam etmektedir. Bu amaçla tiroid kanseri hastalarının biyokimyasal değerlendirmesinde serum
tiroglobülini (Tg) ve kalsitonin tayininden genomik ve
proteomiks araştırmalarına kadar çok sayıda alanda
gerçekleşmektedir23-25 (Tablo 2). Bu araştırmalarda
özellikle neoplastik tiroid hastalıklarında amaçlanan
başlıca husus, cerrahiye karar vermeden önce benign
ve malign ayırımını yapmaktır26,27. Bunun dışında, tedaviye rehberliğin yanında tiroid hastalıklarının gelişme, progresyon ve agresifliğindeki heterojenlik nedeni
ile prognozu belirlemede de işe yarayabilirler. İnce iğne
biyopsisinin (İİAB) tanısal açıdan yanlış negatiflik ve
pozitiflikler gösterebilmesi nedeni ile birtakım sınırlılıkları söz konusudur. Tiroid tümörü gelişimine katılan
moleküler mekanizmaların anlaşılmaya başlaması ile
İİAB ile aşılamayan zorlukları aşmak için moleküler
araçların kullanılması gündeme gelmiştir. Preoperatif
İİAB örneklerinde genomik, transkriptomik ve proteomik analizler tiroid nodüllerinin preoperatif benign ve
malign ayırımında işe yarayabilir. Bu analizler operasyon kararını, seçimini ve daha etkili tedavilerin uygulanmasını sağlar23. Bu amaçla özellikle genetik
değişiklikleri kullanmak gündeme gelmiş olsa da bunlar tiroid tümörlerinin küçük bir alt grubunda etkin olmaktadır. Öte yandan soğuk nodüllerin moleküler
patogenezi daha çözülememiştir24. Bundan dolayı tiroid
tümörlerinde farklı ekspresyon şekillerinin belirlenmesinde yeni araçlara gereksinim duyulmuştur24,28. Klinik
doktorlarına hastalarını yeterli ve etkin şekilde tedavi
edebilmeleri amacıyla kapsamlı veriler sağlamak için
tek molekül assay’den tam bir biyoişaretleyici paneline
kadar değişen tanısal testler üzerinde çalışılmalıdır.
Transkriptomiks ve proteomiks tarama, tanı, prognoz
ve tedavi için hedefleri belirlemede kapsamlı yeni biyoişaretleyici saptanması, tiroid kanserlerinin yönetilmesinde işe yarayacak potansiyel taşımaktadır24. Yukarıda
da ifade edildiği gibi proteomiks terimi özel bir biyolo-
jik durumda belirli bir zaman ya da durumda eksprese
edilen tüm proteinlerin toplamından oluşan proteomun
bütün olarak analizidir29. Araştırmalardaki temel hedef
spesifik bir protein biyoişaretleyicinin belirlenmesi ve
bu biyoişaretleyici ile belirli bir tiroid kanseri histo-tipinin eşleştirilmesi düşüncesidir. Transkriptomiks ise
genom tarafından üretilen tüm mRNA ürünlerinde
meydana gelen değişimlerin takip edilmesi yöntemidir.
Proteinler yapılacak çalışmaya uygun olarak serumdan, tiroid dokusundan ve hücre hatlarından farklı tekniklerle elde edilebilir ve bu örnekler ile proteomiks
uygulamaları gerçekleştirilebilir24,30,31.
Bu alanda ilk çalışma 2D-GE (iki boyutlu jel elektroforezi) metodunu kullanan araştırmacılar tarafından
geliştirilmiştir. Araştırmacılar deneysel modellerinde tiroid dokusunda TSH uyarısı sonrası fosforilasyon aşamasındaki değişiklikleri incelemişlerdir32. Bundan
sonra ise iki boyutlu analizin tiroid dokusunda uygulanması için farklı metotlar tanımlanmıştır33. Ancak
insan tiroid dokusunda proteomiks çalışmaları için
bazı örneklerden kaynaklanan zorluklar ortaya çıkmıştır. Bu zorluklar arasında tiroid doku örneğinde tiroglobülin (Tg) miktarındaki çeşitlilik, tümörlerin köken
aldığı hücre ve doku tipindeki heterojenlik, özellikle çalışmada kullanılan doku örneklerinin sınıflandırılmasında yaşanan güçlükler ve tiroid dokusundan elde
edilen protein örneklerinin çok geniş bir dinamik yapı
göstermesi sayılabilir. Bunlara şöyle örnekler verebiliriz: İlk olarak Tg içeriği açısından bakıldığında makro
ve mikrofoliküler yapılar yüksek ya da düşük hücre sayısı ile ilişkisiz Tg düzeyi gösterirler. Folikül, kan damarı ya da eritrosit gibi yapıların proteomik örüntüsü
(paterni) farklılık gösterdiği için spesifik bir proteindeki
artış ya da azalış için alt sınır değerinin tanımlanması
zorlaşabilir. Tiroid proteomunda bu değerler örneğin
tiroglobülin için 75 mg/mL’ye kadar çıkarken interlökinler için 1 ng/mL’den daha az bir değer gösterir24. Bu
sorunları aşmak için araştırmacılar farklı stratejiler
kullanmışlardır. Sentrifugal ultrafiltrasyon ve “size-exclusion” kromatografisi iki boyutlu (2D) jel örneğinin
oluşturulmasındaki güçlükle birlikte Tg dışındaki
önemli proteinlerin kaybı ile sonuçlanmaktadır. Bu
problem farklı denatüre veya denatüre olmayan örneklerin protein özütlerinin hazırlanması ve HPLC-elüsyon tamponu, farklı akım hızı ve protein elüsyonu için
farklı gradyantlar kullanmakla çözümlenememiştir34.
Hücre tiplerindeki heterojenite sorununu çözmek ve
belli hücre tiplerini izole etmek için “laser-capture”
mikrodiseksiyon denenmiştir. Özellikle proteomiks çalışmalarında tirosit yönünden zenginleştirmenin oldukça işe yaradığı bildirilmiştir34. Tg folikül lümeninde
ekstrasellüler depolandığı için önce stromal sonra koloidal 2 basamaklı mikrodiseksiyon gerektirir. Bu yöntem Tg’yi uzaklaştırmak için yeterli ise de proteomda
çok az olan proteinler gösterilemez ve 2D jeller üze© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
Proteomiks nedir? Tiroid hastalıklarıyla ilgili araştırmalarda proteomiks
rinde oluşan yatay süprüntüler (horizontal streaks) jellerin kalitesini ve spotların analizini bozmaktadır. Bu
yüzden kaliteli bir sonuç için en az yüz bin mikrodiseksiyon gerekmektedir. Bu da örneklerin proteolitik degradasyon riskini artırmaktadır. Bunun için her
dokudaki spesifik Tg içeriği için düzenleme yapmak gerekmektedir24,34.
Srisomsap ve arkadaşları 2D jel elektroforezi kullanarak tiroid dokusunu normal tiroid dokusu, multinodüler guatr, diferansiye tiroid karsinomları, foliküler
adenom, Graves hastalığı olan tiroid dokusu gibi farklı
örneklerde incelemişler ve bu doku örneklerinde 32 farklı
protein belirlemişlerdir. Katepsin B’nin her formunu
özellikle papiller tiroid kanserli dokuda tespit etmişlerdir35. Bunun dışında başka bir çalışmada ise SELDI-TOF
kullanılarak normal tiroid dokusu, papiller tiroid kanserleri ve diğer tümör tipleri incelenmiştir36. SELDI-TOF
yöntemiyle kütle spektrometri ile spesifik protein setini
yakalamak için farklı kromatografik yüzeyler kullanılarak protein çipleri işlenir. Bu yöntemin zorluğu proteinlerin yüklerinden ve kütlelerinden etkilenmesidir. Oluşan
pikler proteinlerin kütlesi ile ilişkilidir. Bu yüzden Sofiadis ve arkadaşları diferansiye tiroid karsinomlarından
elde ettikleri sitoplazmik ve nükleer protein özütlerinin
detaylı analizini yaptıklarında papiller ve foliküler kanserlerde farklılaşan 13 proteini göstermişlerdir. Bunların
içinde en yüksek skorla tespit edileni S100A6 proteini
olarak bildirilmiştir. Bu durum immünopresipitasyon,
sıvı kromatografi kütle spektrometrisi ile doğrulandığı
gibi Western blotlama ile de papiller kanserlerde daha
yüksek olduğu ortaya konulmuştur24,36-38. Yine araştırmacılar BRAF mutasyonunun bu belirlenen proteinle ilişkili
olmadığını göstermişlerdir39. Başka bir araştırmacı grubu
ise yine foliküler ve papiller kanserlerde önce jel elektroforezi ardından MALDI-TOF yöntemi ile ekspresyonu
artmış proteinleri belirlemişler ve diğer aday proteinlerle
birlikte S100A6’nın papiller tiroid kanserlerinde potansiyel biyoişaretleyici olarak kullanılabileceğini ileri sürmüşlerdir.
Brown ve ark. 16 vakaya ait doku incelemelerinde
papiller kanserler ile normal tiroid dokusundan elde
edilen örnekleri karşılaştırmışlardır. Bu çalışmada 5 papiller karsinom, 3 foliküler adenom vakasından ve normal bireylerden alınan tiroid dokuları incelenmiştir.
Papiller kanser grubundan ve foliküler adenomdan elde
edilen normal tiroid dokusu örnekleri 2D’li jel elektroforezinde benzer bir ekspresyon profili göstermiştir.
Normal doku ile papiller kanserde farklılık arz eden 31
proteinin eksprese olduğu gösterilmiştir. İmmünohistokimyasal yöntemler ile yapılan doğrulama çalışmaları
sonucunda S1006A proteininin papiller kanserlerde
normal tiroid dokusuna göre 6.5 kat daha fazla eksprese
olduğu gösterilmiştir39.
Diğer bir çalışmada ise 5 foliküler tiroid kanseri ve
6 foliküler adenomdan oluşan bir vaka serisinde jel elek© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176
175
troforezi kullanılarak foliküler kanser örnekleri foliküler adenom örneklerinden elde edilen proteinler ile karşılaştırılmıştır. Aralarında başka çalışmalarda da
gösterilmiş olan annexin A3, protein disülfit izomeraz,
katepsin B gibi 54 protein kütle spektrometrisi ile analiz
edilmiştir. Sonuçlar immünohistokimyasal olarak da
doğrulanmıştır. Bu çalışmada örneklerdeki Tg içeriği
dikkate alınmamıştır40,41.
Krause ve ark. 20 benign soğuk nodül, ayrıca normal tiroid dokusu örneklerinde kantitatif proteom analizi yaptıklarında soğuk nodüllerde normal tiroid
dokusuna göre farklılaşan 13 protein spotu saptamışlardır34,41. Diğer iki çalışmada ise papiller tiroid kanserli
hastaların serumları ya da biyopsileri SELDI-TOF tekniği ile incelenmiştir. Çalışmalarda kanser, benign doku
ve sağlıklı bireye ait örneklerde farklı protein örnekleri
bulunmuştur42-44.
2007 yılında yapılan bir çalışmada tiroid hücre dizilerinin in vivo tümörlerin özelliklerini taşımadıkları ileri
sürülmüştü. Ancak son zamanlarda Arcinas ve ark. tiroid
tümör hücre dizilerinde insan tiroid kanseri için protein
profilleri tanımlamışlardır. Bu araştırmacılar glikoproteinleri özel bir denatürasyon süreci, sindirim, solid faz ekstraksiyonu ve elektrosprey iyonizasyon tandem kütle
spektrometresi (ESI-MS/MS) analizine tabi tutmuşlardır31. Sonuçlar proteomiksin farklı tiroid kanseri histolojik tiplerinde farklı olduğunu göstermiştir. Bunun dışında
ince iğne aspirasyon biyopsisi örneklerinde44,46 ve insan
tümör dokularında proteomiks analizi yapılmıştır34,38,41,47.
Sonuç olarak tiroid neoplazmaları için işe yarar biyoişaretleyicileri belirlemek ve tiroid kanser biyolojisi ile ilgili
bilgilerimizi derinleştirmek için daha fazla çalışmaya gereksinim olduğu kanaatine vardık.
Yayına hazırlanması için alınmış herhangi bir bağış ya da
destek yoktur.
Kaynaklar
1. O'Farrell PH. High resolution two-dimensional electrophoresis
of proteins. J Biol Chem 1975;250(10):4007-4021.
2. Wasinger VC, Cordwell SJ, Cerpa-Poljak A, et al. Progress
with gene-product mapping of the Mollicules: Mycoplasma genitalium. Electrophoresis 1995;7(7):1090–1094.
3. Tambor V, Fučíková A, Lenčo J, et al. Application of proteomics in biomarker discovery: a primer for the clinician. Physiol
Res 2010;59(4):471-497
4. Nair KS, Jaleel A, Asmann YW, Short KR, Raghavakaimal S.
Proteomic research: potential opportunities for clinical and
physiological investigators. Am J Physiol Endocrinol Metab
2004; 286(6):863-874.
5. Kosak ST, Groudine M. Gene order and dynamic domains, Science 2004;306:644–647.
6. Cho WC. Proteomics technologies and challenges. Genomics
Proteomics Bioinformatics 2007;5(2):77-85.
7. Gry M, Rimini R, Strömberg S, et al. Correlations between
RNA and protein expression profiles in 23 human cell lines.
BMC Genomics 2009;10:365.
8. Hattori M. Finishing the euchromatic sequence of the human
176
Cantürk NZ. ve ark.
genome. Tanpakushitsu Kakusan Koso. 2005;50(2):162-168.
9. Boja E, Hiltke T, Rivers R, et al. Evolution of clinical proteomics
and its role in medicine. J Proteome Res 2011; 10(1):66-84.
10. Bjellqvist B, Ek K, Righetti PG, et al. Isoelectric focusing in immobilized pH gradients: principle, methodology and some applications. J Biochem Biophys Methods 1982; 6:317-339.
11. Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 1970; 227:
680-685.
12. Unlü M, Morgan ME, Minden JS. Difference gel electrophoresis: a single gel method for detecting changes in protein extracts. Electrophoresis. 1997;18(11):2071-2077.
13. Minden JS, Dowd SR, Meyer HE, Stühler K. Difference gel
electrophoresis. Electrophoresis 2009; 30:156-161.
14. Tannu NS, Hemby SE. Methods for proteomics in neuroscience. Prog Brain Res 2006;158:41-82.
15. Ong SE, Blagoev B, Kratchmarova I, et al. Stable isotope labeling by amino acids in cell culture, SILAC, as a simple and
accurate approach to expression proteomics. Mol Cell Proteomics 2002;1:376–386.
16. Rigbolt KT, Blagoev B. Proteome-wide quantitation by SILAC.
Methods Mol Biol 2010; 658:187-204.
17. Gundry RL, White MY, Murray CI, et al. Preparation of proteins
and peptides for mass spectrometry analysis in a bottom-up
proteomics workflow. Curr Protoc Mol Biol 2009;Chapter
10:Unit10.25.
18. Bantscheff M, Schirle M, Sweetman G, Rick J, Kuster B. Quantitative mass spectrometry in proteomics: a critical review. Anal
Bioanal Chem 2007;389(4):1017-1031.
19. Miyagi M, Rao KC. Proteolytic 18O-labeling strategies for
quantitative proteomics. Mass Spectrom Rev 2007;26(1):121136.
20. Ye X, Luke B, Andresson T, Blonder J. 18O stable isotope labeling in MS-based proteomics. Brief Funct Genomic Proteomic 2009;8(2):136-144.
21. Iliuk A, Galan J, Tao WA. Playing tag with quantitative proteomics. Anal Bioanal Chem 2009; 393(2):503-513.
22. Guo Y, Fu Z, Van Eyk JE. A proteomic primer for the clinician.
Proc Am Thorac Soc 2007;4(1):9-17.
23. Giordano TJ. Genome-wide studies in thyroid neoplasia. Endocrinol Metab Clin North Am 2008; 37:311–331.
24. Krause K, JeBnitzer Bi Fuhrer D. Proteomics in thyroid tumor
research. J Clin Endocrinol Metab 2009;94:2717-2724.
25. Carpi A, Mechanick JI, Saussez S, Nicolai A. Thyroid tumor
marker genomics and proteomics: Diagnostic and clinical implications. J Cell Physiol 2010;224:612-619.
26. Castro MR, Gharib H. Continuing controversies in the management of thyroid nodules. Ann Intern Med 2005; 142:926-931
27. Hegedüs L. Clinical Practice. The thyroid nodule. N Eng J Med
2004;351:1764-1771.
28. Haugen BR, Duncan MW. Application of proteomics to thyroid
neoplasms: Are we there yet? Thyroid 2010;20:1051-1052.
29. Brentani RR, Carraro DM, Verjovski-Almeida S, et al. Gene
expression arrays in cancer research: Methods and applications. Crit Rev Oncol Hematol 2005;54:95–105.
30. Lubitz CC, Ugras SK, Kazam JJ, et al. Microarray analysis of
thyroid nodule fine-needle aspirates accurately classifies benign and malignant lesions. J Mol Diagn 2006;8:490–498.
31. Arcinas A, Yen TY, Kebebew E, Macher BA. Cell surface and
32.
33.
34.
35.
36.
37.
38.
39.
40.
41.
42.
43.
44.
45.
46.
47.
secreted protein profile of human thyroid cancer cell lines reveal distinct glycoprotein patterns. J Proteome Res
2009;8:3958–3968.
Lecocq R, Lamy F, Dumont JE. Pattern of protein phosphorylation in intact stimulated cells: thyrotropin and dog thyroid. Eur
J Biochem 1979;102:147–152.
Lecocq R, Lamy F, Dumont JE. Use of two-dimensional gel
electrophoresis and autoradiography as a tool in cell biology:
the example of the thyroid and the liver. Electrophoresis
1990;11:200–212
Krause K, Schierhorn A, Sinz A, et al. Toward the application
of proteomics to human thyroid tissue. Thyroid 2006;16:1131–
1143.
Srisomsap C, Subhasitanont P, Otto A, et al. Detection of cathepsin B up-regulation in neoplastic thyroid tissues by proteomic analysis. Proteomics 2002;2:706-712.
Sofiadis A, Dinets A, Orre LM, et al. Proteomic study of thyroid
tumors reveals frequent up-regulation of the Ca(2+)-binding
protein S100A6 in papillary thyroid carcinoma. Thyroid 2010;
20(10):1067-1076.
De Petris L, Orre LM, Kanter L, et al. Tumor expression of
S100A6 correlates with survival of patients with stage I nonsmall cell lung cancer. Lung Cancer 63:410-417.
Orre LM, Pernemalm M, Lenquist J, Lowensohn R, Lehtio J.
Up regulation, modification, and translocation of S100A6 induced by exposure to ionizing radiation revealed by proteomics
profilling. Mol Cell Proteomics 2007; 6:2122-2131.
Brown LM, Helmke SM, Hunsucker SW, et al. Quantitative and
qualitative differences in protein expression between papillary
thyroid carcinoma and normal thyroid tissue. Mol Carcinog
2006; 45:613-626.
Netea-Maier RT, Hunsucker SW, Hoevenaars BM, et al. Discovery and validation of protein abundance differences between
follicular
thyroid
neoplasms.
Cancer
Res
2008;68:1572–1580.
Krause K, Karger S, Schierhorn A, Poncin S, Many MC, Fuhrer
D. Proteomic profiling of cold thyroid nodules. Endocrinology
2007;148:1754–1763.
Moretz 3rd WH, Gourin CG, Terris DJ, et al. Detection of papillary thyroid carcinoma with serum protein profile analysis.
Arch Otolaryngol Head Neck Surg 2008;134:198–202.
Wang JX, Yu JK, Wang L, Liu QL, Zhang J, Zheng S. Application of serum protein fingerprint in diagnosis of papillary thyroid
carcinoma. Proteomics 2006;6:5344–5349.
Suriano R, Lin Y, Ashok BT, et al. Pilot study using SELDI-TOFMS based proteomic profile for the identification of diagnostic
biomarkers of thyroid proliferative diseases. J Proteome Res
2006;5:856–861
Van Staveren WC, Solı´s DW, Delys L, et al. Human thyroid
tumor cell lines derived from different tumor types present a
common dedifferentiated phenotype. Cancer Res.
2007;67(17):8113-8120.
Giusti L, Iacconi P, Ciregia F, et al. Fine needle aspiration of
thyroid nodules:proteomic analysis to identify cancer biomarkers. J Proteome Res 2008;7:4079-4088.
RussoD, Bisca A, Celano M, et al Proteomic analysis of human
thyroid cell lines reveals reduced nuclear localization of MnSOD in poorly differentiated thyroid cancer cells. J Endocrinol
Invest 2005;28:137-144.
© 2011 Endokrinolojide Diyalog Derneği
Endokrinolojide Diyalog 2011, 8(4): 166-176